Introduction. Malgré un traitement optimal par insuline, certains patients diabétiques présentent une variabilité glycémique importante associée à des évènements métaboliques majeurs impactant leur qualité de vie, définissant le diabète instable. La greffe d'îlots pancréatiques est alors indiquée. Ces îlots sont isolés du pancréas d’un donneur décédé puis maintenus en culture pendant 24 à 72h pour permettre l’immunosuppression du receveur. La viabilité des îlots humains diminue après leur isolement, et environ la moitié seront détruits suite à la greffe en raison de divers stress (inflammation, privation de substrat, hypoxie), obligeant à multiplier les greffes (2 à 3) pour atteindre un objectif glycémique optimal. La photobiomodulation (PBM) implique l'absorption sélective de certaines longueurs d'onde par les mitochondries, entraînant des modifications biologiques telles qu'une amélioration de la viabilité cellulaire et une réduction de l'inflammation. Bien que la PBM ait démontré des effets positifs dans le traitement de complications du diabète telles que les ulcères, les douleurs neuropathiques et l'intolérance au glucose, son impact direct sur les cellules bêta et les îlots est peu documenté. Objectifs. Ce travail visait à évaluer l'effet in vitro de la PBM à 670 nm et 2,8 mW/cm² sur les cellules bêta (MIN6), les îlots de rats et humains et son influence in vivo sur des rats diabétiques induits par la streptozotocine, greffés d’îlots pré-conditionnés par PBM. Résultats. Les résultats ont démontré qu'une exposition de 5sec à 24h à la PBM n'altérait ni la viabilité ni la fonctionnalité des MIN6 et des îlots de rats. Le pré-conditionnement des cellules MIN6 et des îlots de rats avec 24h de PBM avant un stress inflammatoire (TNF-α, Interféron-γ, IL-1β) ou par privation de substrats (glucose et sérum) a réduit l'impact de ces stress sur : la viabilité, la sécrétion d'insuline en réponse au glucose et les fonctions mitochondriales. Cette protection était également observée lorsque la PBM était appliquée simultanément aux stress. En revanche, aucun effet n’était observé en cas de stress par hypoxie (1% d’O2), probablement en lien avec un impact plus faible de ce stress sur les fonctions mitochondriales des cellules bêta. Dans un modèle de rats diabétiques greffés d'îlots préconditionnés par PBM et comparés à des îlots non préconditionnés, les paramètres métaboliques tels que la prise de poids, la glycémie, la sécrétion de c-peptide et le test de tolérance au glucose étaient comparables, indiquant que le pré-conditionnement des îlots n'altérait pas leur fonctionnement in vivo à long terme. De plus, l'application de la PBM sur les îlots humains après isolement améliorait leur viabilité et leur sécrétion d'insuline en réponse au glucose. Le préconditionnement de ces îlots humains par la PBM avant un stress inflammatoire permettait de maintenir leur viabilité et leur fonctionnalité à un niveau similaire à celui d’îlots non stressés. Discussion. En somme, la PBM appliquée aux cellules bêta et aux îlots de rats, non soumis à un stress préalable, n'affecte pas leur viabilité ni leur fonctionnalité in vitro et in vivo. Après isolement, les îlots humains présentent une viabilité réduite par rapport aux îlots de rats, principalement à cause du processus d'isolement des îlots humains. Ainsi, la PBM appliquée aux îlots humains après leur isolement améliore leur viabilité et leur fonctionnalité. De plus, l'application préalable de la PBM avant des stress in vitro permettait de limiter l'impact de ces stress sur les MIN6, les îlots de rats et les îlots humains. Ces résultats suggèrent que la PBM pourrait être envisagée comme une technique non invasive et relativement simple à mettre en œuvre, applicable pendant la période de culture des îlots humains (24-72h) pour les protéger du stress associé à la greffe. Ceci pourrait potentiellement réduire le nombre de greffes nécessaires par patient pour atteindre un contrôle glycémique satisfaisant.